先端プラットフォーム技術開発部門プロジェクト

代表的な大型プロジェクト

  1. NEDO カーボンリサイクル実現を加速するバイオ由来製品生産技術の開発「データベース空間からの新規酵素リソースの創出」（2020–2026年度）（研究担当者：近藤昭彦 教授, 蓮沼誠久 教授）
  2. JSPS基盤研究（A）「半導体光触媒による水の4電子酸化反応：高効率な逐次物質変換のメカニズム」（2020-2022年度）（研究代表者：大西　洋 教授）
  3. NEDO 植物等の生物を用いた高機能品生産技術の開発（研究開発項目[4] 微生物による高機能品生産技術開発）「希少アミノ酸エルゴチオネイン高生産スマートセルの開発」（2019-2020年度）（研究担当者：石井　純 准教授）
  4. JSPS 国際共同研究加速基金（国際共同研究強化(B)）「人工光合成の学理：タンタル酸ナトリウム光触媒をプラットフォームとする多国間協働」（2018-2022年度）（研究代表者：大西　洋 教授）
  5. AMED 次世代治療・診断実現のための創薬基盤技術開発事業 バイオ医薬品の高度製造技術の開発「高性能な国産細胞株の構築」（2018-2020年度）（研究担当者：近藤昭彦 教授，石井　純 准教授, 柘植謙爾 客員准教授）
  6. AMED 次世代治療・診断実現のための創薬基盤技術開発事業 バイオ医薬品の高度製造技術の開発「先端的バイオ製造技術開発」（2018-2020年度）（研究担当者：石井　純 准教授）
  7. 文部科学省 地域イノベーション・エコシステム形成プログラム「バイオ経済を加速する革新技術： ゲノム編集・合成技術の事業化」 （2017-2021年度）（研究担当者：近藤昭彦 教授，西田敬二 教授，柘植謙爾 客員准教授，島谷善平 特命助教）
  8. JST 産学共創プラットフォーム共同研究推進プログラム 「ゲノムワイド点変異スクリーニング系の開発」（2017-2020年度）（研究代表者：西田敬二 教授，寺本潤 特命助教）
  9. NEDO 「ゲノム編集の国産技術基盤プラットフォームの確立」（2016-2020年度）（研究担当者：西田敬二 教授，藤倉 潮 特命助教，光延仁志 特命助教, 片山健太 特命助教）
  10. NEDO 植物等の生物を用いた高機能品生産技術の開発「高生産性微生物創製に資する情報解析システムの開発」（2016-2020年度）（研究担当者：近藤昭彦 教授，蓮沼誠久 教授，石井純 准教授，柘植謙爾 客員准教授）
  11. JSPS 基盤研究（A）「タンタル酸ナトリウム光触媒のダイナミズム:世界最高収率を実現するしくみの解明」（2016-2019年度）（研究代表者：大西　洋 教授）
  12. JSPS 新学術領域研究「光エネルギー変換システムの再最適化」（2016-2020年度）（研究担当者：秋本誠志 准教授）
  13. JSPS 二国間共同研究事業「固液界面エピタキシャル接合の分子論的理解:ピコ力学計測と分子動力学計算の恊働」（2016-2018年度）（研究代表者：大西　洋 教授）
  14. 文部科学省 バイオプロダクション次世代農工連携拠点（2008-2018年度）（研究担当者：近藤昭彦 教授，蓮沼誠久 教授，西田敬二 教授，大西　洋 教授，富永圭介 教授，丸山達生 教授，秋本誠志 准教授，石井純 准教授，柘植謙爾 客員准教授，島谷善平 特命助教）

先端計測研究グループ

  1. Kosaka, T., Teduka, Y., Ogura, T., Zhou, Y., Hisatomi, T., Nishiyama, H., Domen, K., Takahashi, Y., Onishi, H. (2020) Transient Kinetics of O2 Evolution in Photocatalytic Water-Splitting Reaction. ACS Catalysis, 13159-13164.
  2. Sudrajat, H.; Fadlallah, M.; Tao, S.; Kitta, M.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2020) Dopant Site in Indium-Doped SrTiO3 Photocatalysts.Phys. Chem. Chem. Phys., 22, 19178-19187.
  3. Sudrajat, H.; Kitta, M.; Ito, R.; Nagai, S.; Yoshida, T.; Katoh, R.; Ohtani, B.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2020) Water Splitting Activity of La-Doped NaTaO3 Photocatalysts Sensitive to Spatial Distribution of Dopants. Journal of Physical Chemistry C , 124, 15285–15294.
  4. Fujiwara, T.; Sasahara, A.; Happo, N.; Kimura, K.; Hayashi, K.; Onishi, H. (2020) Single-Crystal Model of Highly Efficient Water-Splitting Photocatalysts: A KTaO3 Wafer Doped with Calcium Cations. Chemistry of Materials , 32, 1439–1447.
  5. Kitta, M.; Onishi, H. (2020) Preparation of the NaTaO3 Crystal from the KTaO3 Substrate Via Topotactic Alkaline Cation Substitution as Confirmed by Transmission Electron Microscopy. e-Journal of Surface Science and Nanotechnology , 18, 32–37.
  6. Teduka, Y.; Sasahara, A.; Onishi, H. (2020) Atomic Force Microscopy Imaging of Crystalline Sucrose in Alcohols. ACS Omega , 5, 2569–2574.
  7. Xue, S.; Sasahara, A.; Onishi, H. (2020) Atom-Scale Imaging of TiO2(110) Surface in Water by Frequency-Modulation Atomic Force Microscopy. The Journal of Chemical Physics, 152, 054703 (7 pages).
  8. Sudrajat, H.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2020) Visible Light Responsive La and Fe Co-Doped NaTaO3 Photocatalysts: Local Structure around Dopants. Chemical Physics, 531, 110648 (7 pages).
  9. Söngen, H.; Jaques, Y. M.; Zivanovic, L.; Seibert, S.; Bechstein, R.; Spijker, P.; Onishi, H.; Foster, A. S.; Kühnle, A. (2019)Hydration Layers at the Graphite–Water Interface: Attraction or Confinement? Physical Review B , 200, 205410.
  10. Moriguchi, S.; Tsujimoto, T.; Sasahara, A.; Kokawa, R.; Onishi, H. (2019) Nanometer-Scale Distribution of Lubricant Modifier on Iron Films: A Frequency-Modulation Atomic Force Microscopy Study Combined with Friction Test. ACS Omega, 4, 17593-17599.
  11. Sudrajat, H.; Kitta, M.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2019) Double Doping of NaTaO3 Photocatalysts with La and Mn for Strongly Enhanced Visible-Light Absorption. ACS Applied Energy Materials, 2, 7518-7526.
  12. Furukawa, S.; Amano, K.-i.; Ishihara, T.; Hashimoto, K.; Nishi, N.; Onishi, H.; Sakka, T.(2019)Enhancement of Stratification of Colloidal Particles near a Substrate Induced by Addition of Non-Adsorbing Polymers. Chemical Physics Letters, 734, 136705.
  13. Sudrajat, H.; Dhakal, D.; Kitta, M.; Sasaki, T.; Ozawa, A.; Babel, S.; Yoshida, T.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2019) Electron Population and Water Splitting Activity Controlled by Strontium Cations Doped in KTaO3 Photocatalysts. Journal of Physical Chemistry C , 123, 18387-18397.
  14. Mizutani, S.; Karimata, I.; An, L.; Sato, T.; Kobori, Y.; Onishi, H.; Tachikawa, T. (2019) Charge Carrier Dynamics in Sr-Doped NaTaO3 Photocatalysts Revealed by Deep Uv Single-Particle Microspectroscopy. Journal of Physical Chemistry C, 123, 12592-12598.
  15. Kitta, M.; Onishi, H. (2019) Preparation of Visible-Light Responsible Rutile-TiO2(110) Wafer with Well-Defined Surface by Chromium and Antimony Codoping. e-Journal of Surface Science and Nanotechnology, 17, 5-9.
  16. Sudrajat, H.; Zhou, Y.; Sasaki, T.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2019)The Atomic-Scale Structure of LaCrO3-NaTaO3 Solid Solution Photocatalysts with Enhanced Electron Population. Phys. Chem. Chem. Phys., 21, 5148-5157.
  17. Honda, H.; Sasahara, A.; Onishi, H. (2019) Cobalt Porphyrins on Mica: Atomic Force Microscope Imaging in Organic Solvents. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, 561, 194-200.
  18. Zhang, F., Wang, HW., Tominaga, K., Hayashi, M., Sasaki, T. (2019) Terahertz Fingerprints of Short-Range Correlations of Disordered Atoms in Diflunisal, J. Phys. Chem. A. 123(21), 4555-4564.
  19. Nagao, R., Yokono, M., Ueno, Y., Shen, J.-R., Akimoto, S. (2019) pH-Sensing machinery of excitation energy transfer in diatom PSI–FCPI complexes, J. Phys. Chem. Lett., 10, 3531–3535.
  20. Nagao, R., Kato, K., Suzuki, T., Ifuku, K., Uchiyama, I., Kashino, Y., Dohmae, N., Akimoto, S., Shen, J.-R., Miyazaki, N., Akita, F.(2019) Structural basis for energy harvesting and dissipation in a diatom PSII–FCPII supercomplex, Nature Plants, 5, 890–901.
  21. Ueno, Y., Nagao, R., Shen, J.-R., Akimoto, S.(2019) Spectral properties and excitation relaxation of novel fucoxanthin chlorophyll a/c-binding protein complexes, J. Phys. Chem. Lett., 10, 5148–5152.
  22. Araki, Y.; Sekine, T.; Chang, R.; Hayashi, T.; Onishi, H. (2018) Molecular-Scale Structures of Surface and Hydration of Bioinert Mixedcharged Self-Assembled Monolayers Investigated by the Frequency Modulation Atomic Force Microscopy. RSC Advances, 8, 24660-24664.
  23. An, L.; Sasaki, T.; Weidler, P.; Wöll, C.; Ichikuni, N.; Onishi, H. (2018) Local Environment of Strontium Cations Activating NaTaO3 Photocatalysts. ACS Catalysis, 8, 880-885.
  24. Okuda, M., Higashi, M., Ohta, K., Saito, S., Tominaga, K. (2018) Theoretical investigation on vibrational frequency fluctuations of SCN-derivatized vibrational probe molecule in water. Chemical Physics. 512. 82-87.
  25. Okuda, M., Ohta, K., Tominaga, K. (2018) Rotational Dynamics of Solutes with Multiple Single Bond Axes Studied by Infrared Pump–Probe Spectroscopy. J. Phys. Chem. A . 122(4), 946–954.
  26. Ueno, Y., Shimakawa, G., Miyake, S., Akimoto, C. (2018) Light-harvesting strategy during CO2-dependent photosynthesis in the green alga Chlamydomonas reinhardtii, J. Phys. Chem. Lett., 9, 1028–1033.
  27. Kosuge, K., Tokutsu, R., Kim, E., Akimoto, S., Yokono, M., Ueno, Y., Minagawa, J. (2018) LHCSR1-dependent fluorescence quenching is mediated by excitation energy transfer from LHCII to photosystem I in Chlamydomonas reinhardtii, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,115, 3722–3727.

ゲノム編集研究グループ

  1. Sakata, RC., Ishiguro, S., Mori, H., Tanaka, M., Tatsuno, K., Ueda, H., Yamamoto, S., Seki, M., Masuyama, N., Nishida, K., Nishimasu, H., Arakawa, K., Kondo, A., Nureki, O., Tomita, M., Aburatani, H., Yachie, N. (2020) Base editors for simultaneous introduction of C-to-T and A-to-G mutations. Nature Biotechnology. Jul;38(7):865-869.
  2. Furuhata Y., Sakai A, Murakami T, Morikawa M, Nakamura C, Yoshizumi T, Fujikura U, Nishida K, Kato Y. (2019) A method using electroporation for the protein delivery of Cre recombinase into cultured Arabidopsis cells with an intact cell wall. Sci Rep. Feb 15;9(1):2163.
  3. Shimatani Z, Ariizumi T, Fujikura U, Kondo A, Ezura H, Nishida K. (2019) Targeted Base Editing with CRISPR-Deaminase in Tomato. Methods Mol Biol. 1917:297-307.
  4. Shimatani, Z., Fujikura, U., Ishii, H., Matsui, Y., Suzuki, M., Ueke, Y., Taoka, K., Terada, R., Nishida, K.*, Kondo, A.* (2018) Inheritance of co-edited genes by CRISPR-based targeted nucleotide substitutions in rice. Plant Physiology and Biochemistry, 131: 78-83
  5. Shimatani Z, Fujikura U, Ishii H, Terada R, Nishida K, Kondo A. (2018) Herbicide tolerance-assisted multiplex targeted nucleotide substitution in rice. Data Brief. 30;20:1325-1331.
  6. Tanaka S, Yoshioka S, Nishida K, Hosokawa H, Kakizuka A, Maegawa S. (2018) In vivo targeted single-nucleotide editing in zebrafish. Sci Rep. 30;8(1):11423.
  7. Arazoe T, Kondo A, Nishida K. (2018) Targeted Nucleotide Editing Technologies for Microbial Metabolic Engineering. Biotechnol J. 13(9)
  8. Banno, S., Nishida, K., Arazoe, T., Mitsunobu, H., Kondo, A. (2018) Deaminase-mediated multiplex genome editing in Escherichia coli. Nature Microbiology 3, 423-429

ゲノム合成研究グループ

  1. Yokomori, M., Tsuge, K., Shohda, K., Suyama, A. (2019) Improved measurement of absolute mRNA quantity without reversetranscription. Analytical Biochemistry, 579, 1-8
  2. Tamano, K., Cox 3rd, R. S., Tsuge, K., Miura, A., Itoh, A., Ishii, J., Tamura, T., Kondo, A., Machida, M. (2019) Heterologous production of free dihomo-ɤ-linolenic acid by Aspergillus oryzae and its extracellular release via surfactant supplementation. J. Biosci. Bioeng. 127, 452-457
  3. Chang, J. J., Anandharaj, M., Ho, C. Y., Tsuge, K., Tsai, T. Y., Ke, H. M., Lin, Y. J., Ha Tran, M. D., Li, W. H., Huang, C. C. (2018) Biomimetic strategy for constructing Clostridium thermocellum cellulosomal operons in Bacillus subtilis. Biotechnol. Biofuels. 11,157

バイオファウンドリー研究グループ

  1. Ito, Y., Terai, G., Ishigami, M., Hashiba, N., Nakamura, Y., Bamba, T., Kumokita, R., Hasunuma, T., Asai, K., Ishii, J.*, Kondo, A.* (2020) Exchange of endogenous and heterogeneous yeast terminators in Pichia pastoris to tune mRNA stability and gene expression. Nucleic Acids Research, in press
  2. Nitta, N., Iino, T., Isozaki, A., Yamagishi, M., Kitahama, Y., Sakuma, S., Suzuki, Y., Tezuka, H., Oikawa, M., Arai, F., Asai, T., Deng, D., Fukuzawa, H., Hase, M., Hasunuma, T., Hayakawa, T., Hiraki, K., Hiramatsu, K., Hoshino, Y., Inaba, M., Inoue, Y., Ito, T., Kajikawa, M., Karakawa, H., Kasai, Y., Kato, Y., Kobayashi, H., Lei, C., Matsusaka, S., Mikami, H., Nakagawa, A., Numata, K., Ota, T., Sekiya, T., Shiba, K., Shirasaki, Y., Suzuki, N., Tanaka, S., Ueno, S., Watarai, H., Yamano, T., Yazawa, M., Yonamine, Y., Di Carlo, D., Hosokawa, Y., Uemura, S., Sugimura, T., Ozeki, Y., Goda, K. (2020) Raman image-activated cell sorting. Nature Communications, 11, 3452
  3. Isozaki, A., Nakagawa, Y., Loo, MH., Shibata, Y., Tanaka, N., Setyaningrum, DL., Park, JW., Shirasaki, Y., Mikami, H., Huang, D., Tsoi, H., Riche, CT., Ota, T., Miwa, H., Kanda, Y., Ito, T., Yamada, K., Iwata, O., Suzuki, K., Ohnuki, S., Ohya, Y., Kato, Y., Hasunuma, T., Matsusaka, S., Yamagishi, M., Yazawa, M., Uemura, S., Nagasawa, K., Watarai, H., Di Carlo, D., Goda, K. (2020) Sequentially addressable dielectrophoretic array for high-throughput sorting of large-volume biological compartments. Science Advances, 6(22), eaba6712
  4. Watanabe, N., Murata, M., Ogawa, T., Vavricka, CJ., Kondo, A., Ogino, C., Araki, M. (2020) Exploration and evaluation of machine learning-based models for predicting enzymatic reactions. Journal of Chemical Information and Modeling, 60(3), 1833-1843
  5. Inokuma, K., Kurono, H., den Haan, R., van Zyl, W. H., Hasunuma, T., Kondo, A. (2020) Novel strategy for anchorage position control of GPI-attached proteins in the yeast cell wall using different GPI-anchoring domains. Metabolic Engineering, 57, 110-117
  6. Hillson, N., Caddick, M., Cai, Y., Carrasco, JA., Chang, MW., Curach, NC., Bell, DJ., Le Feuvre, R., Friedman, DC., Fu, X., Gold, ND., Herrgård, MJ., Holowko, MB., Johnson, JR., Johnson, RA., Keasling, JD., Kitney, RI., Kondo, A., Liu, C., Martin, VJJ., Menolascina, F., Ogino, C., Patron, NJ., Pavan, M., Poh, CL., Pretorius, IS., Rosser, SJ., Scrutton, NS., Storch, M., Tekotte, H., Travnik, E., Vickers, CE., Yew, WS., Yuan, Y., Zhao, H., Freemont, PS. (2019) Building a global alliance of biofoundries. Nature Communications, 10(1): 2040
  7. Vavricka, CJ., Yoshida, T., Kuriya, Y., Takahashi, S., Ogawa, T., Ono, F., Agari, K., Kiyota, H., Li, J., Ishii, J., Tsuge, K., Minami, H., Araki, M., Hasunuma, T., Kondo, A. (2019) Mechanism-based tuning of insect 3,4-dihydroxyphenylacetaldehyde synthase for synthetic bioproduction of benzylisoquinoline alkaloids. Nature Communications, 10, 2015
  8. Tominaga, D., Kawaguchi, H., Hori, Y., Hasunuma, T., Ogino, C., Aburatani, S. (2018) Mathematical model for small size time series data of bacterial secondary metabolic pathways, Bioinformatics and Biology Insights, 12: 1-7
  9. Bamba, T., Inokuma, K., Hasunuma, T., Kondo, A. (2018) Enhanced cell-surface display of a heterologous protein using SED1 anchoring system in SED1-disrupted Saccharomyces cerevisiae strain. Journal of Bioscience and Bioengineering, 125(3), 306-310
  10. Ito, Y., Watanabe, T., Aikawa, S., Nishi, T., Nishiyama, T., Nakamura, Y., Hasunuma, T., Okubo, Y., Ishii, J.*, Kondo, A.* (2018) Deletion of DNA ligase IV homolog confers higher gene targeting efficiency on homologous recombination in Komagataella phaffii. FEMS Yeast Research, 18(7)
  11. Eguchi, Y., Makanae, K., Hasunuma, T., Ishibashi, Y., Kito, K., Moriya, H. (2018) Estimating the protein burden limit of yeast cells by measuring expression limits of glycolytic proteins. eLife, 7: e34595
  12. Nakamura, Y., Nishi, T., Noguchi, R., Ito, Y., Watanabe, T., Nishiyama, T., Aikawa, S., Hasunuma, T., Ishii, J.*, Okubo, Y., Kondo, A.* (2018) A stable, autonomously replicating plasmid vector containing Pichia pastoris centromeric DNA. Applied and Environmental Microbiology, 84(15), e02882-17

先端メタボロミクス研究グループ

  1. Takenaka, M., Yoshida, T., Hori, Y., Bamba, T., Vavricka, CJ., Hattori, T., Hayakawa, Y., Hasunuma, T.*, Kondo, A. (2021) An ion-pair free LC-MS/MS method for quantitative metabolite profiling of microbial bioproduction systems, Talanta, 222, 121625
  2. Vavricka, CJ., Hasunuma, T., Kondo, A. (2020) Dynamic metabolomics for engineering biology: Accelerating learning cycles for bioproduction, Trends in Biotechnology, 38(1), 68-82
  3. Sakihama, Y., Hidese, R., Hasunuma, T.*, Kondo, A. * (2019) Increased flux in acetyl-CoA synthetic pathway and oxidative TCA cycle of Kluyveromyces marxianus under respiratory conditions, Scientific reports, in press
  4. Kato, Y., Fujihara, Y., Vavricka, CJ., Chang, JS., Hasunuma, T. *, Kondo, A. (2019) Light/dark cycling causes delayed lipid accumulation and increased photoperiod-based biomass yield by altering metabolic flux in oleaginous Chlamydomonas sp., Biotechnology for Biofuels, 12: 39

総説

  1. 大西洋，森口志穂, 周波数変調原子間力顕微鏡（FM-AFM）の原理と水中・油中での計測事例. 水中・液中における測定・評価と応用技術, S&T出版，pp 3-15. 2020
  2. Maruyama, T*., Restu, W. K. Intracellular self-assembly of supramolecular gelators to selectively kill cells of interest. Polymer J. 52, 883–889. 2020
  3. 大西洋，粉川良平, 進歩する原子間力顕微鏡, 周波数変調方式による液中計測と潤滑油への応用. ペトロテック，42, 801-805. 2019
  4. 森口志穂，粉川良平，辻本鉄平，笹原亮，大西洋, 周波数変調原子間力顕微鏡による固液界面構造解析. トライボロジスト, 64, 648-654. 2019
  5. Onishi, H., Sodium Tantalate Photocatalysts Doped with Metal Cations: Why Are They Active for Water Splitting? ChemSusChem 12, 1825-1834. 2019
  6. 大西洋, 共同利用研究におけるデュアルサポート. 分子研レターズ，79, 40. 2019
  7. Katayama K, Mitsunobu H, Nishida K. (2019) Mammalian synthetic biology by CRISPRs engineering and applications. Curr Opin Chem Biol. Oct;52:79-84.
  8. 柘植謙爾, 寺井悟朗, 谷内江望, DBTLサイクルに即した長鎖DNA構築技術の開発, 特集 NEDOスマートセルプロジェクト, 長鎖DNA合成・解析技術の開発, バイオサイエンスとインダストリー, 77, 408-409 (2019)
  9. 蓮沼誠久, スマートセル開発に資するメタボロミクス技術, 特集 NEDOスマートセルプロジェクト, メタボローム解析技術開発, バイオサイエンスとインダストリー(B&I), vol.77(5), 410-411 (2019)
  10. 向山正治, 近藤昭彦, スマートセル開発のためのバイオ技術とデジタル技術の革新と融合 バイオ生産に資するDBTLサイクルの構築に向けて, バイオサイエンスとインダストリー, vol. 77(2), 199-201 (2019)
  11. Yokono, M., Akimoto, S. Energy transfer and distribution in photosystem super/megacomplex of plants, Curr. Opin. Biotechnol., 54, 50–56. 2018.
  12. Arazoe, T., Kondo, A.*, Nishida, K.* (2018) Targeted nucleotide editing technologies for microbial metabolic engineering. Biotechnology Journal, 13(9), 1700596
  13. 西田敬二, 進展するゲノム編集, 現代化学, 1月号, No.562, ＜特集＞生命をつくる：ゲノム編集の時代, 26-29 (2018)
  14. 柘植謙爾, 高橋俊介, 近藤昭彦, OGAB法による長鎖DNA合成技術, スマートセルインダストリー -微生物細胞を用いた物質生産の展望-, 第1編 ハイスループット合成・分析・評価技術, 第1章 ハイスループット長鎖DNA合成技術, 19-25, シーエムシー出版 (2018)
  15. 柘植謙爾, 石井純, 荒木通啓, 近藤昭彦, ゲノム合成の潮流のインパクト 微生物による物質生産, 現代化学, 1月号, No.562, ＜特集＞生命をつくる：ゲノム編集の時代, 36-41 (2018)
  16. Nakamura, Y., Kondo, A., Ishii, J., Biosensing techniques in yeast: G-protein signaling and protein-protein interaction assays for monitoring ligand stimulation and oligomer formation of heterologous GPCRs. Peripheral Membrane Proteins, ISBN 978-1-78923-513-5, IntechOpen, Chapter 3, 25-48 (2018)
  17. Inokuma, K., Hasunuma, T., Kondo, A. Emerging Areas in Bioengineering：Whole cell biocatalysts using enzymes displayed on yeast cell surface. Chang HN (Ed) Wiley-VCH, 81-92 (2018)
  18. 高久洋暁, 荒木秀雄, 小笠原渉, 田代康介, 蓮沼誠久, 油谷幸代, 矢追克郎, 第9章 油脂酵母による油脂発酵生産性改善へ向けた技術開発, スマートセルインダストリー -微生物細胞を用いた物質生産の展望-, 第3編 産業応用へのアプローチ, 206-214, シーエムシー出版 (2018)
  19. 蓮沼誠久, スマートセル設計に資するメタボローム解析, スマートセルインダストリー -微生物細胞を用いた物質生産の展望-, 第1編 ハイスループット合成・分析・評価技術, 第3章 オミクス解析技術, 62-68, シーエムシー出版 (2018)
  20. 石井純, 西晶子, 北野美保, 中村朋美, 庄司信一郎, 秀瀬涼太, 蓮沼誠久, 近藤昭彦, 微生物を用いた物質生産とハイスループット微生物構築技術, スマートセルインダストリー -微生物細胞を用いた物質生産の展望-, 第1編 ハイスループット合成・分析・評価技術, 第2章 ハイスループット微生物構築・評価技術, 39-43, シーエムシー出版 (2018)
  21. 蓮沼誠久, 田村具博, 近藤昭彦, 総論, スマートセルインダストリー -微生物細胞を用いた物質生産の展望-, 1-9, シーエムシー出版 (2018)